4-Oksydoreduktazy.pdf

(632 KB) Pobierz
Microsoft Word - 6. Oksydoreduktazy.doc
Ę wiczenie 6
OKSYDOREDUKTAZY
Cz ħĻę do Ļ wiadczalna obejmuje:
wykrywanie aktywno Ļ ci katalazy, peroksydazy, oksydazy polifenolowej i oksydazy cyto-
chromowej w ekstrakcie z bulwy ziemniaka
WPROWADZENIE
Oksydoreduktazy katalizuj Ģ przeniesienie równowa Ň ników redukcyjnych mi ħ dzy
dwoma układami redoks. Termin równowa Ň nik redukcyjny okre Ļ la kombinacj ħ elektronów i
protonów, które pojawiaj Ģ si ħ w procesach redoks (Ryc. 1).
Ryc. 1. Równowa Ň niki redukcyjne w biologicznych układach redoks
Procesy oksydacyjno-redukcyjne w komórkach zachodz Ģ we wszystkich przedziałach
subkomórkowych (cytozolu, wewn ħ trznej błonie mitochondriów, w błonie tylakoidów, błonach
siateczki Ļ ródplazmatycznej, błonie j Ģ drowej, a tak Ň e w przestrzeni mi ħ dzykomórkowej). Pro-
cesy te s Ģ katalizowane przez enzymy współdziałaj Ģ ce z rozpuszczalnymi (koenzymy) lub
zwi Ģ zanymi z białkiem enzymatycznym (grupy prostetyczne) kofaktorami . Najwa Ň niejszymi
kofaktorami oksydoreduktaz s Ģ : NAD + , NADP + , FMN, FAD, ubichinon (koenzym Q), plasto-
chinon, plastocyjanina, lipoamid, hem oraz kilka rodzajów centrów Ň elazowo-siarkowych.
Dinukleotyd nikotynoamidoadeninowy (NAD + ) oraz jego forma ufosforylowana – fosforan
dinukleotydu nikotynoamidoadeninowego (NADP + ), koenzymy przenosz Ģ ce jony wodorkowe
(2e - i 1H + ) (Ryc. 2A), wykorzystywane s Ģ przez ponad 200 oksydoreduktaz. W utlenionej for-
mie tych koenzymów w pier Ļ cieniu aromatycznym amidu kwasu nikotynowego dodatnie ła-
dunki s Ģ zdelokalizowane (Ryc. 2B). Jedna z dwóch przechodz Ģ cych w siebie struktur ma w
poło Ň eniu para do atomu azotu ubogi w elektrony, dodatnio naładowany atom w ħ gla . W to
1
239417328.001.png
miejsce zostaje wprowadzony jon wodorkowy, tworz Ģ c zredukowane formy NADH-H + i
NADPH-H + . Poprawny zapis zredukowanych koenzymów pokazuje, Ň e przyj ħ ciu jonu wodor-
kowego przez koenzym towarzyszy uwolnienie protonu.
A
B
Ryc. 2 . Dinukleotyd nikotynoamidoadeninowy. A – ogólny wzór NADH.H + , B - przył Ģ czenie
jonu wodorkowego do w ħ gla w pier Ļ cieniu kwasu nikotynowego (Koolman i Röhm, 2005)
Powstawanie nadtlenku wodoru (H 2 O 2 ) w komórce
W komórce nadtlenek wodoru powstaje w wielu ró Ň nych reakcjach. Jednym z jego Ņ ró-
deł jest reakcja katalizowana przez dysmutaz ħ ponadtlenkow Ģ – enzym usuwaj Ģ cy aniony
ponadtlenkowe zgodnie z reakcj Ģ :
O - 2 + O - 2 + 2H + ® H 2 O 2 + O 2
Anion ponadtlenkowy ( O - 2 ) jest produktem ubocznym wielu reakcji redoks powstaj Ģ cym w
wyniku cz ħĻ ciowej redukcji tlenu cz Ģ steczkowego (przyj ħ cie jednego elektronu). W komórkach
ro Ļ lin aniony ponadtlenkowe powstaj Ģ np. jako produkty uboczne przepływu elektronów przez
centra Ň elazowo-siarkowe (reakcja Mehlera) w obr ħ bie fotosystemu I, czy w reakcji katalizo-
wanej przez oksydaz ħ NADPH.H + zlokalizowan Ģ w błonie komórkowej, gdzie aktywne formy
tlenu słu ŇĢ do obrony przed patogennymi drobnoustrojami.
2
239417328.002.png 239417328.003.png
Wa Ň nymi enzymami wytwarzaj Ģ cymi H 2 O 2 s Ģ tak Ň e oksydazy flawoproteinowe , do
których nale ŇĢ m. in. oksydazy L-aminokwasowe i D-aminokwasowe. Utlenianie aminokwasu
przebiega zgodnie z reakcj Ģ :
aminokwas + O 2 + H 2 O ® ketokwas + H 2 O 2 + NH 3
W komórkach zwierz Ģ t H 2 O 2 powstaje tak Ň e w peroksysomach w reakcji utleniania
kwasów tłuszczowych o dłu Ň szym ni Ň 18C ła ı cuchu w ħ glowodorowym. W tym wypadku szlak
b -oksydacji , podobnie jak utlenianie kwasów tłuszczowych u ro Ļ lin, rozpoczyna si ħ od reakcji
katalizowanej przez oksydaz ħ acylo-CoA zgodnie z równaniem:
acylo-CoA + O 2 ® Ș 2 –enoilo-CoA + H 2 O 2
Bogatym Ņ ródłem H 2 O 2 w komórkach ro Ļ lin jest szlak przemian okre Ļ lany jako fotood-
dychanie . Enzym „rubisco” ( karboksylaza/oksygenaza rybulozo-1,5-bisfosforanu ) mo Ň e do
rybulozo-1,5-bisfosforanu przył Ģ cza ę CO 2 lub O 2 . W pierwszym wypadku powstaj Ģ 2 cz Ģ stecz-
ki kwasu 3-fosfoglicerynowego, natomiast w reakcji, w której zamiast CO 2 uczestniczy O 2
powstaje 1 cz Ģ steczka kwasu fosfoglicerynowego i 1 cz Ģ steczka kwasu 2-fosfoglikolanowego.
Powstaj Ģ cy w chloroplastach 2-fosfoglikolan jest najpierw defosforylowany, a nast ħ pnie po-
wstaj Ģ cy glikolan w peroksysomach zostaje utleniony przez oksydaz ħ glikolanow Ģ do glioksa-
lanu zgodnie z reakcj Ģ :
glikolan + O 2 ® glioksalan + H 2 O 2
Nadtlenek wodoru jest zwi Ģ zkiem szkodliwym, głównie ze wzgl ħ du na mo Ň liwo Ļę po-
wstawania w obecno Ļ ci Fe 2+ rodników hydroksylowych . OH , a tak Ň e tlenu singletowego 1 O 2 .
Enzymatyczne usuwanie H 2 O 2
Enzymami funkcjonuj Ģ cymi w usuwaniu H 2 O 2 s Ģ katalaza i peroksydaza. Katalaza , en-
zym zawieraj Ģ cy hem, dysproporcjonuje dwie cz Ģ steczki H 2 O 2 do H 2 O i O 2 zgodnie z równa-
niem:
2 H 2 O 2 ® 2H 2 O + O 2
Katalazy mog Ģ tak Ň e wykazywa ę aktywno Ļę peroksydacyjn Ģ , w której H 2 O 2 jest wykorzysty-
wany do utleniania alkoholi, aldehydów, fenoli czy azotynów.
Peroksydazy redukuj Ģ nadtlenek wodoru równocze Ļ nie utleniaj Ģ c (odwodorowuj Ģ c)
Ň ne substraty. Reakcj ħ katalizowan Ģ przez peroksydazy mo Ň na zapisa ę :
SH 2 + H 2 O 2 ® S + 2H 2 O
SH 2 i S to, odpowiednio, substrat w stanie zredukowanym i utlenionym . Grup Ģ prostetyczn Ģ
peroksydaz ro Ļ linnych jest Ň elazoprotoporfiryna (hemina), natomiast enzymy zwierz ħ ce zawie-
3
raj Ģ inny typ heminy. Wa Ň n Ģ funkcj ħ ochronn Ģ w komórkach zwierz Ģ t i ro Ļ lin spełnia perok-
sydaza glutationowa współdziałaj Ģ ca z glutationem w usuwaniu nadtlenku wodoru i szkodli-
wych nadtlenków organicznych. W centrum aktywnym tego enzymu wyst ħ puje analog cysteiny
(selenocysteina), w którym siarka została zast Ģ piona selenem.
Oksydazy fenolowe – przenosz Ģ elektrony i protony z orto - lub para -dwufenoli na tlen. Oksy-
daza o -dwufenolwa poza utlenianiem o -dwufenolu katalizuje tak Ň e reakcj ħ hydroksylacja.
Oksydaza cytochromowa (EC 1.9.3.1) – ko ı cowe ogniwo ła ı cucha transportu elektronów
zlokalizowanego w wewn ħ trznej błonie mitochondriów
Ła ı cuch oddechowy katalizuje transport elektronów z NADH-H + lub zredukowanego
ubichinonu na tlen cz Ģ steczkowy . Ubichinon mo Ň e by ę redukowany enzymatycznie w reak-
cjach, w których np. utleniany jest bursztynian b Ģ d Ņ flawoproteina (ETF) redukowana przez
dehydrogenaz ħ acylo-CoA, dehydrogenaz ħ 3-fosfoglicerynianu lub dehydrogenazy utleniaj Ģ ce
cholin ħ czy dihydroorotan. Wi ħ ksza cz ħĻę energii towarzysz Ģ ca reakcjom redoks wykorzysty-
wana jest do formowania w poprzek wewn ħ trznej błony mitochondrialnej gradientu protono-
wego , który z kolei nap ħ dza syntez ħ ATP katalizowan Ģ przez syntaz ħ ATP. Ła ı cuch odde-
chowy obejmuje 3 białkowe kompleksy (kompleks I, III i IV) oraz dwie cz Ģ steczki przeno Ļ ni-
kowe: ubichinon (Q) i cytochrom c (Ryc. 3). Poza tym, z błon Ģ wewn ħ trzn Ģ zwi Ģ zana jest
dehydrogenaza bursztynianowa (kompleks II) oraz inne dehydrogenazy przekazuj Ģ ce elek-
trony na ubichinon (Q) (nie pokazano na Ryc. 3).
Ryc. 3. Transport elektronów w ła ı cuchu oddechowym utworzonym przez trzy kompleksy
białkowe i dwa ruchome no Ļ niki (ubichinon i cytochrom c) przenosz Ģ ce elektrony z utleniane-
go substratu na tlen. Transportowi elektronów wzdłu Ň ła ı cucha oddechowego towarzyszy wek-
torowe pompowanie protonów z matriks do przestrzeni mi ħ dzybłonowej (Alberts i wsp. 1999)
4
239417328.004.png
Oksydaza cytochromowa przejmuje elektrony z małego białka, cytochromu c , zawie-
raj Ģ cego Ň elazo w układzie hemowym i przekazuje je na tlen cz Ģ steczkowy (Ryc. 3). Do reduk-
cji cz Ģ steczki tlenu (O 2 ) do dwóch cz Ģ steczek wody potrzebne s Ģ 4 elektrony (4 cz Ģ steczki zre-
dukowanego cytochromu c). Przeniesieniu dwóch elektronów przez zwi Ģ zane z enzymem ko-
faktory (dwa jony miedzi: CuA i CuB, jony Ň elaza w dwóch układach hemowych: hem a i hem
a 3 ) towarzyszy wypompowanie z matriks do przestrzeni mi ħ dzybłonowej 4 H + .
WYKONANIE
Odczynniki:
1.
3% roztwór H 2 O 2
2.
Roztwór KCN, UWAGA! KCN jest siln Ģ trucizn Ģ !
3.
Roztwór benzydyny w kwasie octowym
4.
Odczynnik NADI (przygotowa ę bezpo Ļ rednio przed u Ň yciem, mieszaj Ģ c p -fenyleno-
dwuamin ħ z a-naftolem w stosunku 1 : 1 (1 ml + 1 ml)
5.
0,1M bufor fosforanowy o pH 7,4
6.
Bufor fosforanowy o pH 7,4
7.
Roztwór pirokatechiny
Materiał:
Ekstrakt z ziemniaka – obrany i umyty ziemniak utrze ę na tarce. Miazg ħ wło Ň y ę do woreczka
z gazy i zanurzy ę w zlewce zawieraj Ģ cej około 200 ml wody, a nast ħ pnie lekko wycisn Ģę za-
warto Ļę . Roztwór łagodnie wymiesza ę . Po opadni ħ ciu skrobi na dno zlewki, płyn ostro Ň nie zla ę
znad osadu. Uzyskujemy w ten sposób wodny ekstrakt enzymu . Cz ħĻę nads Ģ czu (około 50
ml) przela ę do zlewki i zagotowa ę , a nast ħ pnie zdenaturowany termicznie ekstrakt ostudzi ę
wkładaj Ģ c zlewk ħ do zimnej wody.
Zasada wykrywania katalazy:
Tlen uwolniony w reakcji dysproporcjowania H 2 O 2 katalizowanej przez katalaz ħ , wy-
dzielaj Ģ c si ħ z roztworu powoduje jego silne pienienie:
2 H 2 O 2 ® 2 H 2 O + O 2
5
Zgłoś jeśli naruszono regulamin