biochemia 1 - sprawozdanie O.pdf

(76 KB) Pobierz
Politechnika Wrocławska
Wydział Chemiczny
Strona 1 z 3
Data zajęć: 2008/05/21
Sprawozdanie 9.
Biochemia 1 (BTC3009l)
laboratorium
dr inż. Beata Greb-Markiewicz
Łukasz Czok
Mateusz Jędrzejewski
Grupa: IV
Ćwiczenie O
Elektroforetyczny rozkład białek
Wstęp
Elektroforeza to dyfuzja fazy rozproszonej względem ośrodka dyspersyjnego pod wpływem
przyłożonego z zewnątrz pola elektrycznego. Następuje rozdział cząsteczek obdarzonych
ładunkiem. Szybkość przemieszczania się zależy od własności takich jak: wielkość cząsteczki,
ładunek, zdolność do wiązania wody i jonów. Szybkość jest także wprost proporcjonalna
do przyłożonego napięcia. Miarą szybkości poruszania się jest szybkość w jednostkowym polu
elektrycznym zwana ruchliwością elektroforetyczną (R f ). Ruchliwość elektroforetyczna
danego rozdzielanego składnika jest stała podczas elektroforezy dla stałych warunków
eksperymentu takich jak: natężenie i napięcie prądu, pH, temperatura oraz siła jonowa.
Ruchliwość elektroforetyczna jest wprost proporcjonalny do ładunku elektrycznego
cząsteczki i odwrotnie proporcjonalny do jej wielkości. Zależy także od kształtu cząsteczki.
Ruchliwość elektroforetyczna
(1)
gdzie:
droga przebyta przez i-ty składnik (prążek),
droga przebyta przez wskaźnik.
Elektroforeza jako technika analityczna ma wiele odmian. Ze względu na rodzaj ośrodka
dyspersyjnego wyróżniamy: elektroforezę bibułową, kapilarną i żelową. Elektroforeza
kapilarna zwana jest też elektroforezą w wolnym buforze. Elektrolit swobodnie przemiesza
się w aparacie o kształcie U-rurki. Ten rodzaj elektroforezy służy najczęściej do rozdziału
niewielkich cząsteczek.
W elektroforezie żelowej ośrodkiem w którym przemieszczają się badane substancje jest żel.
Najczęściej spotykanym jest żel poliakrylamidowy. Spełnia ona wszystkie cech idealnego
nośnika. Jest uformowany najczęściej na płytce długości kilkunastu centymetrów. Równie
dobrze może być w kształcie okrągłej rurki. Nanosi się próbkę na żel, a do końców żelu
przykłada się stałe napięcie. Otrzymany żel po rozdziale wybarwia się. Rozdzielone frakcje
są widoczne w postaci pasków (prążków). Ten rodzaj elektroforezy jest kombinacją wędrówki
w polu elektrycznym oraz sądzenia molekularnego. Jest najczęściej stosowany do rozdzielania
DNA, RNA lub białek. W elektroforezie można badać ładunek czy wielkość poruszających się
cząsteczek, ale także jednorodność wyizolowanych makrocząsteczek.
Celem ćwiczenia jest przeprowadzenie rozdziału elektroforetycznego w żelu poliakrylamidowym
białka albuminy oraz kwaśnej fosfatazy.
Materiały
a) Odczynniki:
  0,065 M TRIS – kwas borowy (H 3 BO 3 ) – bufor do elektroforezy o pH 9,0,
  0,1% roztwór wodny błękitu bromofenolowego – wskaźnik,
  50% roztwór sacharozy zabarwionej wskaźnikiem,
  rurki z żelem poliakrylamidowym,
  roztwór do barwienia żeli,
  roztwór do odbarwiania żeli,
  roztwór albuminy i fosfatazy kwaśnej – próbki do badań.
1068289659.032.png 1068289659.033.png 1068289659.034.png 1068289659.035.png 1068289659.001.png 1068289659.002.png 1068289659.003.png 1068289659.004.png 1068289659.005.png 1068289659.006.png 1068289659.007.png 1068289659.008.png 1068289659.009.png
 
Politechnika Wrocławska
Wydział Chemiczny
Strona 2 z 3
Data zajęć: 2008/05/21
Sprawozdanie 9.
Biochemia 1 (BTC3009l)
laboratorium
dr inż. Beata Greb-Markiewicz
Łukasz Czok
Mateusz Jędrzejewski
Grupa: IV
Ćwiczenie O
Elektroforetyczny rozkład białek
b) Szkło laboratoryjne:
  probówki małe (2 szt.),
  probówki z korkiem (2 szt.),
  bagietka,
  szkiełko mikroskopowe podstawowe,
  pipeta pasteurowska.
c) Aparatura:
  aparat do elektroforezy z pełnym wyposażeniem,
  łaźnia wodna o temperaturze 55°C.
Wykonanie
Część I Nanoszenie próbek na żel
1. Przygotowano dwie małe probówki.
2. Do każdej z nich dodano po 100 μl sacharozy z barwnikiem.
3. Do pierwszej probówki dodano 100 μl albuminy. Wymieszano.
4. Do drugiej probówki dodano 100 μl kwaśnej fosfatazy. Wymieszano.
5. Zgodnie z instrukcją „O” przygotowano aparat do elektroforezy.
6. Na górę żelu z pierwszej rurki naniesiono 100 μl zawartości probówki pierwszej.
7. Na górę żelu z drugiej rurki naniesiono 100 μl zawartości probówki drugiej.
Część II Rozdział elektroforetyczny
1. Zamknięto górną pokrywą aparat do elektroforezy.
2. Podłączono przewodami do zasilacza i włączono przepływ prądu.
3. Ustawiono natężenie prądu na 3 mA na jeden żel.
4. Odczekano aż wskaźnik przejdzie z żelu zagęszczającego do żelu rozdzielającego w rurce.
5. Ustawiono natężenie prądu na 5 mA na jeden żel.
6. Gdy wskaźnik osiągnął dół żelu wyłączono zasilanie.
Część III Wybarwienie i odbarwianie żelu
1. Wykręcono obie rurki z aparatu do elektroforezy.
2. Żel z każdej rurki wypchnięto bagietką na szkiełko mikroskopowe podstawowe.
3. Odcięto żel zagęszczający oraz część żelu rozdzielającego poniżej wskaźnika.
4. Środkowe części żeli przełożono do odpowiednich probówek z korkami, wskaźnikiem do dołu.
5. Dodano odczynnika zabarwiającego, tyle żeby każdy żelu był całkowicie zalany.
6. Probówki umieszczono w łaźni wodnej 55°C na 15 minut.
7. Odlano barwnik do specjalnego pojemnika.
8. Do żeli w probówkach dodano odczynnika odbarwiającego.
9. Inkubowano w łaźni wodnej 55°C przez 15 minut.
10. Mieszano zawartość probówek.
11. Odlano roztwór.
12. Czynności z pkt. 8, 9, 10,11 powtarzano aż cały żel (poza białkami) odbarwi się.
13. Naszkicowano położenie prążków rysunek 1. oraz rysunek 2.
14. Zmierzono położenie powstałych prążków.
Uwagi
Wybarwianie powtórzono 5-krotnie.
Nie przygotowywano żeli ani nie wypełniano rurek żelem. Skorzystano z już przygotowanych.
1068289659.010.png 1068289659.011.png 1068289659.012.png 1068289659.013.png 1068289659.014.png 1068289659.015.png 1068289659.016.png
 
Politechnika Wrocławska
Wydział Chemiczny
Strona 3 z 3
Data zajęć: 2008/05/21
Sprawozdanie 9.
Biochemia 1 (BTC3009l)
laboratorium
dr inż. Beata Greb-Markiewicz
Łukasz Czok
Mateusz Jędrzejewski
Grupa: IV
Ćwiczenie O
Elektroforetyczny rozkład białek
Wyniki
Po elektroforezie, wybarwieniu i odbarwianiu otrzymano obrazy* prążków na żelu**.
Rysunek. 1. – żel z prążkami
albuminy
Rysunek. 2. – żel z prążkami
kwaśnej fosfatazy
* zachowano skalę 1:1, kierunek dyfuzji białek przebiega z góry na dół,
** z góry odcięto żel zagęszczający, z dołu żel rozdzielający poniżej linii wskaźnika.
Zmierzono położenie prążków w żelu i wyznaczono ruchliwości elektroforetyczne ze wzoru (1).
Dla albuminy (rysunek 1.)
43 mm
25 mm
33 mm
,
Dla kwaśnej fosfatazy (rysunek 2.)
47 mm
20 mm
25 mm
28 mm
,
25 mm
43 mm 0,58
20 mm
47 mm 0,43
,
33 mm
43 mm 0,77
,
25 mm
47 mm 0,53
,
28 mm
47 mm 0,60
Wnioski
Rozdział białek nastąpił ponieważ składają się one z różnych domen, które wykazują różną
ruchliwość elektroforetyczną.
Albumina w elektroforezie dała dwa prążki. Można domniemywać, że składa się z dwóch
heterogenicznych domen. Kwaśna fosfataza w elektroforezie dała trzy prążki. Można
domniemywać, że jest trimerem.
Nie można jednoznacznie zidentyfikować kolejnych domen, ponieważ nie przeprowadzono
elektroforezy porównawczej dla wzorca mas białek. W związku z tym położenie prążka
na żelu nie można przeliczyć na masę danej domeny w Daltonach.
Nie można też jednoznacznie przesądzić o jednorodności badanych preparatów. W tym celu
należałoby przeprowadzić elektroforezę w różnych warunkach, stosując bufory różniące się
pH i siłą jonową.
1068289659.017.png 1068289659.018.png 1068289659.019.png 1068289659.020.png 1068289659.021.png 1068289659.022.png 1068289659.023.png 1068289659.024.png 1068289659.025.png 1068289659.026.png 1068289659.027.png 1068289659.028.png 1068289659.029.png 1068289659.030.png 1068289659.031.png
 
Zgłoś jeśli naruszono regulamin